铁死亡（Ferroptosis）是2012年由Brent R. Stockwell提出的[1]，研究发现Erastin可以特异性诱导Ras突变细胞死亡，但是没有典型的细胞凋亡特征，铁螯合剂可以抑制这一过程，并且另一种化合物RSL3也有类似的细胞死亡表型[2, 3]。与经典的细胞凋亡不同，铁死亡过程中没有细胞皱缩，染色质凝集等现象，但会出现线粒体皱缩，脂质过氧化增加。传统的细胞凋亡，细胞自噬，细胞焦亡的抑制剂不能抑制铁死亡过程，但铁离子螯合剂可以抑制这一过程，说明铁死亡是铁离子依赖的过程。铁摄入增加、外流减少或储存减少可导致铁“超载”从而促进铁死亡。浙江血液样本铁死亡检测项目
除了调控中流细胞内的Fenton反应外,抑制GPX-4活性也是一种非常典型的诱导中流细胞发生特异性铁死亡方式。GPX-4是体内重要的抗氧化系统成员之一,是一种能特异性催化谷胱甘肽将脂质过氧化物转化为类脂醇的硒蛋白,能够降解脂质过氧化物,移除毒性的中间体,在调节铁死亡方面发挥重要作用。目前,抑制GPX-4活性的纳米疗法已被用于诱导铁死亡,主要包括靶向递送GPX-4小分子抑制剂和合理设计具有GPX-4抑制功能的纳米载体材料。例如,RSL3是一种有效的铁死亡诱导剂,以GPX-4为作用靶点,可降低GPX-4的酶活性,诱发中流细胞死亡。河北动物血液样本铁死亡项目细胞内可以使用PGSK探针，流式细胞术或共聚焦显微镜检测细胞内铁含量的细胞膜透性染料，检测铁死亡。
谷胱甘肽过氧化物酶4(glutathioneperoxidase4，GPX4)是一种特殊的酶，可通过GSH清chu脂质过氧化物。研究发现磷脂过氧化的发生依赖于GPX4活性的缺失，GPX4能特异性地抵抗铁死亡对细胞膜脂的过氧化。Park等发现心肌梗死期间抑制GPX4会导致脂质过氧化物的积累，从而导致心肌细胞发生铁死亡。Mja等发现茄碱抑制GPX4的活性增加肝ai细胞中的脂质ROS水平诱导铁死亡。Hu等发现GPX4可保护造血干细胞，抑制脂质过氧化，抑制铁死亡发生。因此，抑制GPX4可以促进脂质过氧化物的积累，诱发铁死亡。
进入细胞的Fe2+可通过二价金属转运蛋白1(DMT1)、铁蛋白的多泡体和外泌体，将铁转运出细胞，抑制DMT1或阻断多泡体和外泌体可限制铁外流，增加细胞内铁水平。Wang等发现口服携带DMT1siRNA的生姜纳米颗粒的衍生脂质载体可减轻遗传性血色病小鼠模型中的铁负荷。此外，Turcu等发现DMT1的抑制剂通过阻断溶酶体铁转运而选择性靶向ai症干细胞，导致溶酶体铁的积累，活性氧的产生并诱导铁死亡。脂质过氧化的反应底物是脂肪酸，脂肪酸包括多聚不饱和脂肪酸和单聚不饱和脂肪酸(monoun[1]saturatedfattyacid，MUFA)，而PUFA比MUFA更容易发生氧化。因此，减少MUFA含量，增加PUFA含量可促进脂质过氧化进程诱导铁死亡的进展。铁死亡的实质是细胞内脂质氧化物代谢障碍，在铁离子催化作用下代谢发生异常。
细胞内的游离铁离子通过芬顿反应(Fentonreaction)与过氧化氢相互作用,从而导致组成生物膜的多不饱和脂肪酸(polyunsaturatedfattyacids,PUFAs)发生脂质过氧化,这是目前已知的铁死亡启动的基础机制.谷胱甘肽过氧化物酶4(glutathioneperoxidase4,GPX4)是一种硒蛋白,它可特异并高效地清chu磷脂过氧化氢,从而抑制铁死亡的发生.无论是使用RSL3等小分子抑制GPX4的活性,还是直接敲除GPX4基因,都会导致磷脂脂质过氧化水平急剧增加和启动铁死亡.Gpx4全身敲除会导致小鼠胚胎在7.5天死亡.可见,GPX4是铁死亡过程中的重要调控因子.铁死亡可通过透射电镜直接观察细胞形态。青海铁死亡检测服务
研究发现，若细胞中 GPX4 表达下调则会对铁死亡更敏感。浙江血液样本铁死亡检测项目
p53是中流抑制基因，通过调控铁死亡影响HCC发生。1)Jiang等研究发现，p53下调SLC7A11转录，影响systemXC－活性，进而诱导肝ai细胞铁死亡。2)p53上调精胺/精脒－N1－乙酰基转移酶1表达，使花生四烯酸15脂氧合酶水平升高，促进脂质过氧化物集聚，诱发铁死亡。3)Gao等发现铁死亡的发生需要谷氨酰胺和谷氨酰胺酶2。谷氨酰胺酶2是谷氨酰胺转化为谷氨酸的关键酶，调节GSH合成。p53上调谷氨酰胺酶2转录，其过表达抑制中流细胞生长和集落形成。这是铁死亡在肝ai中的调控途径之一。浙江血液样本铁死亡检测项目
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